細胞轉染脂質體轉染法
陽離子脂質體表面帶正電荷，能與核酸的磷酸根通過靜電作用，將DNA分子包裹入內，形成DNA脂復合物，也能被表面帶負電的細胞膜吸附，再通過融合或細胞內吞進入細胞。脂質體轉染適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養細胞中，是目前實驗室最方便的轉染方法之一，其轉染率較高，優于磷酸鈣法。由于脂質體對細胞有一定的毒性，所以轉染時間一般不超過24小時。常用細胞類型：cos-7 、BHK、NIH3T3 、Hela等。......閱讀全文
細胞轉染脂質體轉染法
陽離子脂質體表面帶正電荷，能與核酸的磷酸根通過靜電作用，將DNA分子包裹入內，形成DNA脂復合物，也能被表面帶負電的細胞膜吸附，再通過融合或細胞內吞進入細胞。脂質體轉染適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養細胞中，是目前實驗室最方便的轉染方法之一，其轉染率較高，優于磷酸鈣法。由于脂質體對細胞有一定的毒性
脂質體介導DNA轉染法
脂質體（LR）試劑是陽離子脂質體DOTMA和DOPE的混合物（1：1）。它適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養細胞中，是目前條件下最方面的轉染方法之一。轉染率高，優于磷酸鈣法，比它高5-100倍，能把DNA和RNA轉染到各種細胞。用LR進行轉染時，首先需要優化轉染條件，應找出該批LR對轉染某一特定細胞
脂質體介導的真核細胞轉染實驗——脂質體進行穩定轉染
實驗材料哺乳動物細胞試劑、試劑盒DMEM儀器、耗材培養箱離心管實驗步驟1. ?接種細胞（見“脂質體介導短暫表達”步驟1）長至50%匯片。?2. ?制備DNA/脂質體混合物，轉染細胞（見“脂質體介導短暫表達”步驟2和3）。3. ?每孔細胞加入1 ml DMEM-20完全培養液，37℃ 培養箱培養48
細胞轉染：脂質體轉染的幾個實驗方法
實驗原理 脂質 體(LR)試劑是陽離子脂質體DOTMA和DOPE的混合物(1：1)。它適用于把DNA 轉染入懸浮或貼壁培養細胞中，是目前條件下最方面的轉染方法之一。轉染率高，優于磷酸鈣法，比它高5-100倍，能把DNA和RNA轉染到各種細胞。用LR進行轉染時，首先需要優化轉染條件，應找出該批LR對轉
細胞轉染電穿孔轉染法
電流能夠可逆地擊穿細胞膜形成瞬時的水通路或膜上小孔促使DNA分子進入胞內，這種方法就是電穿孔。當遇到某些脂質體轉染效率很低或幾乎無法轉入時建議用電穿孔法轉染。一般情況下，高電場強度會殺死50%-70% 的細胞。現在針對細胞死亡開發出了一種電轉保護劑，可以大大的降低細胞的死亡率，同時提高電穿孔轉染效率
細胞轉染脂質體的選擇
脂質體靶向制劑及質量控制評價一、靶向制劑的定義與分類 靶向制劑亦稱靶向給藥系統(targeting drug delivery system，TDDS)。系指載體將藥物通過局部給藥或全身血液循環而選擇性地濃集定位于靶組織、靶器官、靶細胞或細胞內結構的給藥系統。 靶向制劑特點：定位濃集、控制釋藥、
脂質體轉染法的技術要點
利用脂質體轉染法最重要的就是防止其毒性，因此脂質體與質粒的比例，細胞密度以及轉染的時間長短和培養基中血清的含量都是影響轉染效率的重要問題，通過實驗摸索的合適轉染條件對于效率的提高有巨大的作用。
貼壁細胞的脂質體轉染
一、實驗材料1、宿主細胞CHO（貼壁細胞）2、脂質體LIPOFECTAMINE 2000（invitrogen公司）3、6孔細胞培養版4、無血清培養基OPTI-MEM（GIBICO）5、轉染級質粒二、實驗步驟invitrogen的LIPOFECTAMINE 2000說明書上列舉了24孔、12孔、6孔
脂質體介導的細胞轉染實驗
實驗概要學習和掌握外源基因導入真核細胞的主要方法—脂質體介導的轉染。了解外源基因進入的一般性方法，觀測外源蛋白的表達（綠色熒光蛋白），為染色準備實驗材料。實驗原理外源基因進入細胞主要有四種方法：電擊法、磷酸鈣法和脂質體介導法和病毒介導法。電擊法是在細胞上短時間暫時性的穿孔讓外源質粒進入；磷酸鈣法和脂
化學轉染法人工脂質體法應用
人工脂質體法采用陽離子脂質體，具有較高的轉染效率，不但可以轉染其他化學方法不易轉染的細胞系，而且還能轉染從寡核苷酸到人工酵母染色體不同長度的DNA，以及RNA,和蛋白質。此外，脂質體體外轉染同時適用于瞬時表達和穩定表達，與以往不同的是脂質體還可以介導DNA和RNA轉入動物和人的體內用于基因治療。Li
脂質體轉染的定義
脂質體是磷脂分散在水中時形成的脂質雙分子層，又稱為人工生物膜。
脂質體轉染技術特征
陽離子脂質體表面帶正電荷，能與核酸的磷酸根通過靜電作用將DNA分子包裹入內，形成DNA一脂復合體，也能被表面帶負電荷的細胞膜吸附，再通過膜的融合或細胞的內吞作用，偶爾也通過直接滲透作用，DNA傳遞進入細胞，形成包涵體或進入溶酶體?其中一小部分DNA能從包涵體內釋放，并進入細胞質中，再進一步進入核內轉
脂質體介導的真核細胞轉染實驗
實驗材料 哺乳動物細胞試劑、試劑盒 質粒DNA完全培養基氯化銫DMEM儀器、耗材 培養皿培養箱聚苯乙烯管實驗步驟 1. ?按5×105細胞/孔的量在六孔板中接種指數期生長的細胞，在37℃ 5%CO2培養箱中 培養過夜，直至細胞80%匯片。（如果用100 mm 培養皿代替六孔扳，則培養細胞至80%匯片
脂質體介導的真核細胞轉染實驗
脂質體介導短暫表達 脂質體進行穩定轉染 哺乳動物細胞的選擇標記 ? ? ? ? ? ? 實驗材料 哺乳動物細胞
脂質體介導的瞬時轉染
實驗材料靶細胞DNA試劑、試劑盒陽離子脂質D-PBSA緩沖鹽溶液NaCl0.25%胰蛋白酶儀器、耗材細胞培養基還原的血清培養基無血清培養基多孔培養板實驗步驟A . 貼壁細胞的轉染1. 將 1.3X105?個細胞/孔接種到 6 孔培養板，加 3 ml 培養基。2. 于 37°C 的 CO2?孵箱培養至
脂質體介導的瞬時轉染
? ? ? ? ? ? 實驗材料 靶細胞 DNA 試劑、試劑盒 陽離子脂質 D-PBSA緩沖鹽溶液 Na
脂質體介導的瞬時轉染
實驗材料?靶細胞DNA試劑、試劑盒?陽離子脂質D-PBSA緩沖鹽溶液NaCl 0.25%胰蛋白酶儀器、耗材?細胞培養基還原的血清培養基無血清培養基多孔培養板實驗步驟 A . 貼壁細胞的轉染1. 將 1.3X105 個細胞/孔接種到 6 孔培養板，加 3 ml 培養基。2. 于 37°C 的 CO2
關于脂質體轉染法的基本信息介紹
脂質體轉染法是指陽離子脂質體表面帶正電荷，能與核酸的磷酸根通過靜電作用將DNA分子包裹入內，形成DNA一脂復合體，被表面帶負電荷的細胞膜吸附，再通過膜的融合作用，偶爾也通過直接滲透作用，DNA傳遞進入細胞，形成包涵體或進入溶酶體 其中一小部分DNA能從包涵體內釋放，并進入細胞質中，再進一步進入核
細胞轉染
脂質體介導法 磷酸鈣沉淀法 ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 外源基因進入細胞主要有四種方法：電擊法、磷酸鈣法和脂質體介導法和病毒介導法。電擊法是在細胞上短時間暫時性的
PEI－轉染法
材料： 質粒DNA 指數生長的真核細胞 PEI （聚乙烯亞胺） 1×HBS （pH7.4） 配方： PEI 儲存液（100 μM）：稱取125 mg PEI 粉末溶解于50 ml 1×HBS （pH7.4）中， 0.2 μm 濾膜過濾，儲存于4℃備用。 1×HBS （pH7.4）： 將8.76 g
PEI－轉染法
材料：質粒DNA指數生長的真核細胞PEI （聚乙烯亞胺）1×HBS （pH7.4）配方：PEI 儲存液（100 μM）：稱取125 mg PEI 粉末溶解于50 ml 1×HBS （pH7.4）中， 0.2 μm 濾膜過濾，儲存于4℃備用。1×HBS （pH7.4）： 將8.76 g NaCl 溶解
細胞轉染實驗的實驗步驟細胞轉染
1）轉染試劑的準備A.將400ul去核酸酶水加入管中，震蕩10秒鐘，溶解脂狀物。B.震蕩后將試劑放在－20攝氏度保存，使用前還需震蕩。2）選擇合適的混合比例（1：1－1：2/脂質體體積：DNA質量）來轉染細胞。在一個轉染管中加入合適體積的無血清培養基。加入合適質量的MyoD或者EGFP的DNA，震蕩
磷酸鈣介導的真核細胞轉染實驗——高效轉染法
實驗材料真核細胞試劑、試劑盒完全培養液TEBES儀器、耗材培養箱平板實驗步驟1. ?轉染前一天接種呈指數生長的細胞，密度為5×105/10 cm ?平板。加10 ml 完全培養液，在開始轉染時細胞數應＜106/平板，以留足夠供細胞擴增至少2倍的表面積。2. ?用TE緩沖液稀釋質粒DNA至1 μg/μ
脂質體轉染的幾個實驗方法
實驗原理 脂質 體(LR)試劑是陽離子脂質體DOTMA和DOPE的混合物(1：1)。它適用于把DNA 轉染入懸浮或貼壁培養細胞中，是目前條件下最方面的轉染方法之一。轉染率高，優于磷酸鈣法，比它高5-100倍，能把DNA和RNA轉染到各種細胞。用LR進行轉染時，首先需要優化轉染條件，應找出該批LR對轉
方案27.12－脂質體介導的瞬時轉染
方案27.12 脂質體介導的瞬時轉染 ? ? ? ? ? ? 實驗材料 靶細胞 DNA
脂質體轉染的幾個實驗方法
實驗概要本實驗介紹了脂質體轉染的幾個方法。實驗原理脂質體(LR)試劑是陽離子脂質體DOTMA和DOPE的混合物(1：1)。它適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養細胞中，是目前條件下最方面的轉染方法之一。轉染率高，優于磷酸鈣法，比它高5-100倍，能把DNA和RNA轉染到各種細胞。用LR進行轉染時，首先
脂質體轉染的幾個實驗方法
摘要： 本實驗介紹了脂質體轉染的幾個方法。 實驗原理 脂質 體(LR)試劑是陽離子脂質體DOTMA和DOPE的混合物(1：1)。它適用于把 DNA 轉染入懸浮或貼壁培養細胞中，是目前條件下最方面的轉染方法之一。轉染率高，優于磷酸鈣法，比它高5-
痘苗載體轉染細胞實驗——DOTAP－法
實驗方法原理將感興趣的外源基因亞克隆到質粒轉移載體上，外源基因的兩端為痘苗病毒基因組非必需基因片段。隨后，將重組質粒轉染病毒感染的細胞，痘苗病毒基因組與質粒上同源的部分發生同源重組。應用適當的篩選方案，經幾輪噬斑純化，從細胞裂解物中獲得重組病毒。實驗材料pSCll／pRB21／pSC65／pLW9
細胞瞬時轉染
1. 1細胞瞬時轉染?原理：通過脂質體介導轉染法及電穿孔等基因轉染技術，將靶基因導入細胞，一般在轉染后48小時左右，靶基因即可在細胞內表達。根據不同的實驗目的，48小時后即可進行靶基因表達的檢測等實驗。應用：????觀察目的基因及其表達蛋白在某種細胞中的功能（短時間即可進行觀察，但效應會很快丟失）一
LSCM細胞轉染
細胞轉染對于活細胞實驗，需要實驗設備能夠維持細胞的生長。顯微鏡上需要配備合適的熱臺，可控制一定的?CO2?濃度、合適的濕度和溫度等。此外，是否是倒置顯微鏡??能否使用高倍鏡、油鏡或水鏡觀察細胞??為了便于成像，一般使用底部為玻璃片的細胞培養皿。由于顯微鏡并不是無菌的環境，因此對于一般的活細胞實驗并不