PEI轉染法
材料： 質粒DNA 指數生長的真核細胞 PEI （聚乙烯亞胺） 1×HBS （pH7.4） 配方： PEI 儲存液（100 μM）：稱取125 mg PEI 粉末溶解于50 ml 1×HBS （pH7.4）中， 0.2 μm 濾膜過濾，儲存于4℃備用。 1×HBS （pH7.4）： 將8.76 g NaCl 溶解于900 ml 超純水，加入20 ml 1 M 的HEPES，調pH 值到7.4，定容至1 L，過濾（0.2 μm 濾膜）后儲存于4℃備用。 方法： 1．細胞分盤： 通過胰酶消化收集細胞，用適當的完全培養基以4×105 至8×105細胞/cm2 的密度平鋪細胞于60 mm 組織培養皿上（根據實驗需要選擇培養皿，使細胞貼壁后所占總面積達到培養皿面積的70-90％）。根據細胞貼壁情況于含5％ CO2 的37℃溫箱中孵育8-24 h,當細胞貼壁完全后即可開始轉染。轉染前換入2 mL 預熱的無血清培養基。 2.制備PEI-......閱讀全文
PEI－轉染法
材料： 質粒DNA 指數生長的真核細胞 PEI （聚乙烯亞胺） 1×HBS （pH7.4） 配方： PEI 儲存液（100 μM）：稱取125 mg PEI 粉末溶解于50 ml 1×HBS （pH7.4）中， 0.2 μm 濾膜過濾，儲存于4℃備用。 1×HBS （pH7.4）： 將8.76 g
PEI－轉染法
材料：質粒DNA指數生長的真核細胞PEI （聚乙烯亞胺）1×HBS （pH7.4）配方：PEI 儲存液（100 μM）：稱取125 mg PEI 粉末溶解于50 ml 1×HBS （pH7.4）中， 0.2 μm 濾膜過濾，儲存于4℃備用。1×HBS （pH7.4）： 將8.76 g NaCl 溶解
PEI轉染手冊
使用方法1. 接種細胞：用膠原酶消化細胞并計數（不建議用胰酶）。轉染前 18-24 小時進行細胞的鋪板，以便在轉染時，貼壁細胞的密度大約在 80%左右。注：培養液中的血清和抗生素不影響轉染效率。2. 準備 EZ Trans-DNA 復合物1）轉染前將所有試劑置于室溫 10 分鐘。下面，以轉染 24
pei瞬時轉染原理
pei瞬時轉染技師的原理瞬時轉染是指將構建好的質粒通過某種方式導入到哺乳動物細胞內（主要指HEK293細胞），該質粒上的外源基因不整合到細胞自身的基因組上。
pei配制轉染需要培養基無血清嗎
需要，因為血清組分復雜，會影響轉染復合物的形成。
細胞轉染脂質體轉染法
陽離子脂質體表面帶正電荷，能與核酸的磷酸根通過靜電作用，將DNA分子包裹入內，形成DNA脂復合物，也能被表面帶負電的細胞膜吸附，再通過融合或細胞內吞進入細胞。脂質體轉染適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養細胞中，是目前實驗室最方便的轉染方法之一，其轉染率較高，優于磷酸鈣法。由于脂質體對細胞有一定的毒性
細胞轉染電穿孔轉染法
電流能夠可逆地擊穿細胞膜形成瞬時的水通路或膜上小孔促使DNA分子進入胞內，這種方法就是電穿孔。當遇到某些脂質體轉染效率很低或幾乎無法轉入時建議用電穿孔法轉染。一般情況下，高電場強度會殺死50%-70% 的細胞。現在針對細胞死亡開發出了一種電轉保護劑，可以大大的降低細胞的死亡率，同時提高電穿孔轉染效率
Transfection－with－PEI
實驗概要Use PEI (Linear 25 kDa Reagent) to transfect in HEK293T cells.主要試劑PEI is polyethyleimine, a 25 kDa linear from Polysciences Inc. Make up solutio
細胞轉染技術原理及應用
常規轉染技術可分為兩大類,一類是瞬時轉染,一類是穩定轉染（永久轉染）.前者外源DNA/RNA不整合到宿主染色體中,因此一個宿主細胞中可存在多個拷貝數,產生高水平的表達,但通常只持續幾天,多用于啟動子和其它調控元件的分析.一般來說,超螺旋質粒DNA轉染效率較高,在轉染后24-72小時內（依賴于各種不同
電穿孔法穩定轉染
實驗材料L8057-Y10細胞D-PBSA儀器、耗材培養瓶培養板F12 FB培養基G418(Invitrogen)選擇性培養基電穿孔電穿孔專用杯電穿孔儀II電穿孔儀-II配套的效能擴增器-Plus實驗步驟表達載體與 DNA 制備：pSVTKGH，線性化 [ Selden et al.，1986]此載
電穿孔法穩定轉染
? ? ? ? ? ? 實驗材料 L8057-Y10細胞 D-PBSA 儀器、耗材 培養瓶 培養板
磷酸鈣轉染法
磷酸鈣轉染法材料：質粒DNA指數生長的真核細胞2 M CaCl22×HBS （pH 7.05）配方:2×HBS （pH7.05）：900 ml 超純水中加入NaCl 16.3 g, KCl 0.74 g, Na2HPO4 0.214g，Glucose 2.4 g 和HEPES 10 g，調pH 至7
物理轉染法的介紹
包括：①顯微注射②電穿孔③基因槍等，顯微注射雖然費力，但是非常有效的將核酸導入細胞或細胞核的方法。這種方法常用來制備轉基因動物，但卻不適用于需要大量轉染細胞的研究。電穿孔法常用來轉染如植物原生質體這樣的常規方法不容易轉染的細胞。電穿孔靠脈沖電流在細胞膜上打孔而將核酸導入細胞內。導入的效率與脈沖的強度
瞬時轉染分析法
摘要： 介紹5種瞬時轉染分析法：瞬時轉染分析法、穩定轉染分析法、體外轉錄分析法、轉基因分析法和同源重組分析法. 1.瞬時轉染分析法 目前有很多功能性分析方法用于研究轉錄調控,最常用的方法是瞬時轉染分析法.該方法是通過一定的轉染程序將含目的調控區
電穿孔法穩定轉染
方案27.12 脂質體介導的瞬時轉染 ? ? ? ? ? ? 實驗材料 L8057-Y10細胞 D-PBSA
細胞轉染
脂質體介導法 磷酸鈣沉淀法 ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 外源基因進入細胞主要有四種方法：電擊法、磷酸鈣法和脂質體介導法和病毒介導法。電擊法是在細胞上短時間暫時性的
化學轉染法磷酸鈣法應用
磷酸鈣法是磷酸鈣共沉淀轉染法，因為試劑易取得，價格便宜而被廣泛用于瞬時轉染和穩定轉染的研究，先將DNA和氯化鈣混合，然后加入到PBS中慢慢形成DNA磷酸鈣沉淀，最后把含有沉淀的混懸液加到培養的細胞上，通過細胞胞膜的內吞作用攝入DNA。磷酸鈣似乎還通過抑制血清中和細胞內的核酸酶活性而保護外源DNA免受
脂質體介導DNA轉染法
脂質體（LR）試劑是陽離子脂質體DOTMA和DOPE的混合物（1：1）。它適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養細胞中，是目前條件下最方面的轉染方法之一。轉染率高，優于磷酸鈣法，比它高5-100倍，能把DNA和RNA轉染到各種細胞。用LR進行轉染時，首先需要優化轉染條件，應找出該批LR對轉染某一特定細胞
細胞轉染原理及常見轉染方法的比較（二）
線型PEI（Line PEI，LPEI）與其衍生物用作基因轉染載體的研究比分枝狀PEI（Branched PEI，BPEI）要早一些，過去的研究認為在不考慮具體條件，LPEI/DNA轉染復合物的細胞毒性較低，有利于細胞定位，因此與BPEI相比應該轉染效率高一些。但最近研究表明BPEI的分枝度高有
磷酸鈣介導的真核細胞轉染實驗——高效轉染法
實驗材料真核細胞試劑、試劑盒完全培養液TEBES儀器、耗材培養箱平板實驗步驟1. ?轉染前一天接種呈指數生長的細胞，密度為5×105/10 cm ?平板。加10 ml 完全培養液，在開始轉染時細胞數應＜106/平板，以留足夠供細胞擴增至少2倍的表面積。2. ?用TE緩沖液稀釋質粒DNA至1 μg/μ
化學轉染法DEAE葡聚糖法應用
DEAE-葡聚糖是最早應用哺乳動物細胞轉染試劑之一，DEAE-葡聚糖是陽離子多聚物，它與帶負電的核酸結合后接近細胞膜而被攝取，用DEAE-葡聚糖轉染成功地應用于瞬時表達的研究，但用于穩定轉染卻不是十分可靠。
知識分享：細胞轉染原理及常見轉染方法的比較
實驗原理： 轉染是將外源性基因導入細胞內的一種專門技術。隨著基因與蛋白功能研究的深入，轉染目前已成為實驗室工作中經常涉及的基本方法。 常規轉染技術可分為兩大類,一類是瞬時轉染,一類是穩定轉染（永久轉染）。前者外源 DNA /RNA不整合到宿主染色體中,因此一個宿主細胞中可存在多個拷貝
PolySciences轉染試劑于臨床前和臨床LV及AAV載體制造的應用
Polysciences轉染試劑系列是基于PEI（Polyethylenimine）的產品，因其有效的瞬轉效率和蛋白產量，已廣泛應用于工業化生產和基礎科研中的蛋白表達研究，年文獻發表量已達上千篇。PEI是一種具有較高的陽離子電荷密度的有機大分子，每相隔二個碳原子，即每“第三個原子都是質子化的氨基氮原
載藥系統Zeta電位測試
? ? 寡核苷酸作為重要的特異性調控基因表達物質，已廣泛的應用于藥物開發治療以及相關基因功能研究。但是，寡核苷酸易被核酸酶降解，具有較高的負電荷等缺點，使其直接作為治療藥物穩定性差，跨越細胞膜能力弱，治療效果不好，為了解決以上問題我們采用聚乙烯亞胺800（PEI800）為原料，通過氮-酰化作用結合亞
脂質體轉染法的技術要點
利用脂質體轉染法最重要的就是防止其毒性，因此脂質體與質粒的比例，細胞密度以及轉染的時間長短和培養基中血清的含量都是影響轉染效率的重要問題，通過實驗摸索的合適轉染條件對于效率的提高有巨大的作用。
關于物理轉染法的基本介紹
①顯微注射 ②電穿孔 ③基因槍 顯微注射雖然費力，但是非常有效的將核酸導入細胞或細胞核的方法。這種方法常用來制備轉基因動物，但卻不適用于需要大量轉染細胞的研究。電穿孔法常用來轉染如植物原生質體這樣的常規方法不容易轉染的細胞。電穿孔靠脈沖電流在細胞膜上打孔而將核酸導入細胞內。導入的效率與脈沖
痘苗載體轉染細胞實驗——DOTAP－法
實驗方法原理將感興趣的外源基因亞克隆到質粒轉移載體上，外源基因的兩端為痘苗病毒基因組非必需基因片段。隨后，將重組質粒轉染病毒感染的細胞，痘苗病毒基因組與質粒上同源的部分發生同源重組。應用適當的篩選方案，經幾輪噬斑純化，從細胞裂解物中獲得重組病毒。實驗材料pSCll／pRB21／pSC65／pLW9
簡述細胞轉染的效率
線型PEI（LinePEI,LPEI）與其衍生物用作基因轉染載體的研究比分枝狀PEI（BranchedPEI,BPEI）要早一些，過去的研究認為在不考慮具體條件，LPEI/DNA轉染復合物的細胞毒性較低，有利于細胞定位，因此與BPEI相比應該轉染效率高一些。但最近研究表明BPEI的分枝度高有利于
關于轉染效率的研究
線型PEI（LinePEI,LPEI）與其衍生物用作基因轉染載體的研究比分枝狀PEI（BranchedPEI,BPEI）要早一些，過去的研究認為在不考慮具體條件，LPEI/DNA轉染復合物的細胞毒性較低，有利于細胞定位，因此與BPEI相比應該轉染效率高一些。但最近研究表明BPEI的分枝度高有利于形成
細胞轉染的效率分析
線型PEI（LinePEI,LPEI）與其衍生物用作基因轉染載體的研究比分枝狀PEI（BranchedPEI,BPEI）要早一些，過去的研究認為在不考慮具體條件，LPEI/DNA轉染復合物的細胞毒性較低，有利于細胞定位，因此與BPEI相比應該轉染效率高一些。但最近研究表明BPEI的分枝度高有利于形成