實驗動物的外科技術及急救實驗（三）
（二）基本手術 1.頸部手術 （1）氣管插管術：以家兔為例。術中需使用常用手術器械、絲線、棉球、“Y”形氣管套管、手術臺、20%烏拉坦等。手術前，動物麻醉（20%烏拉坦1g/kg體重耳緣靜脈注射），仰臥位固定，備皮。然后，用解剖刀在頸部，自甲狀軟骨下緣，沿下中線作一長約5～7cm皮膚切口，暴露胸骨舌骨肌。用血管鉗插入左右胸骨舌骨肌之間，作鈍性分離（也可用兩食指分離）。分離時，血管鉗不可插得太深，以免損傷小血管。將兩塊肌肉向兩邊拉開，暴露氣管約5cm。用彎頭血管鉗將氣管與背后的結締組織分開，穿線備用。用解剖刀或手術剪在甲狀軟骨下1cm處的氣管兩軟骨環之間作一倒“T”形切口。切口不宜大于氣管直徑的1/3。如氣管內有血液或分泌物，先用小棉球揩盡，以保證呼吸道通暢。然后，用鑷子夾住切口一角，用適當口徑的氣管套管由切口處向胸端插入氣管內，用備用線扎牢并固定于側管上，以免脫落。 （2）頸部血管分離及插管術：首先......閱讀全文
實驗動物的外科技術及急救實驗（三）
（二）基本手術?1.頸部手術?（1）氣管插管術：以家兔為例。術中需使用常用手術器械、絲線、棉球、“Y”形氣管套管、手術臺、20%烏拉坦等。手術前，動物麻醉（20%烏拉坦1g/kg體重耳緣靜脈注射），仰臥位固定，備皮。然后，用解剖刀在頸部，自甲狀軟骨下緣，沿下中線作一長約5～7cm皮膚切口，暴露胸骨舌
實驗動物的外科技術及急救實驗
實驗步驟一、實驗動物常用的外科基本技術??? （一）基本操作技術???? 1.?切開 根據實驗要求確定手術切口的部位及大小。切開時先繃緊皮膚，將刀刃與皮膚垂直，用力要得當，一次切開皮膚全層，切縫整齊而不偏斜。切開皮膚及皮下組織時，一般要求按解剖層次逐層切開，注意止血，避免損傷深層的重要組織器官（圖1
實驗動物的外科技術及急救實驗（一）
一、實驗動物常用的外科基本技術?（一）基本操作技術?1.?切開 根據實驗要求確定手術切口的部位及大小。切開時先繃緊皮膚，將刀刃與皮膚垂直，用力要得當，一次切開皮膚全層，切縫整齊而不偏斜。切開皮膚及皮下組織時，一般要求按解剖層次逐層切開，注意止血，避免損傷深層的重要組織器官（圖1，圖2）。???圖1圖
實驗動物的外科技術及急救實驗（四）
4.股部手術?（1）股動、靜脈和股神經分離術：股三角內的血管、神經包括股動脈、股靜脈和股神經，處于一層深筋膜之下。分離時，可用蚊式止血鉗在恥骨肌與縫匠肌交點處小心地沿縫匠肌后部內側緣分離，并將縫匠肌后部輕輕向外拉開，其下方即見深筋膜包圍著的血管神經束。仔細分離深筋膜后，血管、神經即完全暴露。股靜脈位
實驗動物的外科技術及急救實驗（二）
3.?組織分離法 分離組織的目的在于充分顯露深部組織，造成手術徑路，便于切除病灶。操作時要注意以下原則：①在同一平面上力求一次垂直切開，以保切口邊緣整齊，禁止斜切和鋸切，以減少損傷，便于愈合。②在切開多層組織時，一般應按組織層次分層切開，切口大小應適當。③切開肌肉時，一般應沿肌纖維方向進行。④要確保
實驗動物外科基本操作技術
1.?切開根據實驗要求確定手術部位切口的大小。切開時先繃緊皮膚,將刀刃與皮膚垂直,用力要得當,1?次切開皮膚全層,切縫整齊而不偏斜。切開皮膚及皮下組織時,要求按解剖層次切開,盡量避開血管并注意止血,避免損傷深層的重要組織器官。2.?止血止血是手術操作中的重要環節。手術過程中止血完善與否,不僅直接影響
實驗動物的急救措施
?當實驗進行中因麻醉過量、大失血、過強的創傷、窒息等各種原因，而使動物血壓急劇下降甚至測不到。呼吸極慢而夫規則甚至呼吸停止、角膜反射消失等臨床死亡癥狀時，應立即進行急救。急救的方法可根據動物情況而定。對狗、兔、貓常用的急救措施有下面幾種。 （一）針刺 針刺人中穴對挽救家兔效果較好。對狗用每分鐘幾
動物實驗中的緊急救助
動物實驗中常見病種：實驗動物人畜共患烈性傳染病病種：大鼠-漢坦病毒；犬：狂犬病毒 實驗動物人畜共患烈性傳染病病種：大鼠-仙臺病毒；大鼠-仙臺病毒、肝炎病毒、鼠病毒；豚鼠-仙臺病毒；兔-出血癥病毒 實驗過程中被動物咬傷后應怎樣處理？?凡被犬（貓）鼠等動物咬、抓、舔傷及因宰殺、剝皮而污染的傷口，除去傷口
動物實驗技術1
實驗動物常用作病原微生物的分離和鑒定，進行動物接種實驗應選擇易感性高、健康的動物。常用的動物有小鼠、豚鼠和家兔。根據實驗要求可通過皮下、皮內、肌肉、腹腔、靜脈等途徑注射。感染動物死亡后，必要時進行尸體解剖并作病原體的檢查。 一、實驗動物接種法 （一）小白鼠接種法 【
動物實驗技術1
實驗動物常用作病原微生物的分離和鑒定，進行動物接種實驗應選擇易感性高、健康的動物。常用的動物有小鼠、豚鼠和家兔。根據實驗要求可通過皮下、皮內、肌肉、腹腔、靜脈等途徑注射。感染動物死亡后，必要時進行尸體解剖并作病原體的檢查。一、實驗動物接種法（一）小白鼠接種法【材料】1．小白鼠。2．無菌注射器(1ml
動物實驗技術2
2．于第①、②、③管內分別加乙型溶血性鏈球菌培養物、四聯球菌培養物、生理鹽水各0.5m1。 3．上述3支試管每管加入5%氯化鈣0.2ml，搖勻，置37℃水浴10min，待血液凝固，再繼續37℃水浴約30min，觀察結果。 【結果】 l．觀察時，可將小試管慢慢傾斜至30°
動物實驗基本操作技術之三“年齡的大致判斷”
一、大、小鼠1、根據形態鑒定日齡（大、小情況基本一樣）?2、根據體重鑒定日齡⑴ 小鼠日齡與體重的對應⑵ 大鼠日齡與體重的對應二、豚鼠一般老年豚鼠牙齒和趾爪長，被毛稀疏無光澤，眼神呆滯，行動遲緩。而年輕豚鼠牙齒短白，爪短軟，眼睛圓亮，行動敏捷，被毛有光澤，且緊貼身體。同樣，也可根據體重來推斷大致年齡。
實驗動物的處死及尸體處理實驗
一、實驗動物的處死方法?1.較大動物的處死方法以下幾種方法適用于豚鼠、貓、兔、狗等較大或更大一點的動物。?（1）空氣栓塞法：將空氣注入動物靜脈，使之很快栓塞而死。當空氣注入靜脈后，可在右心隨著心臟的跳動使空氣與血液相混致血液成泡沫狀，隨血液循環到全身。如進入肺動脈，可阻塞其分支，進入心臟冠狀動脈，造
實驗動物的處死及尸體處理實驗
實驗步驟一、實驗動物的處死方法?1.較大動物的處死方法以下幾種方法適用于豚鼠、貓、兔、狗等較大或更大一點的動物。?（1）空氣栓塞法：將空氣注入動物靜脈，使之很快栓塞而死。當空氣注入靜脈后，可在右心隨著心臟的跳動使空氣與血液相混致血液成泡沫狀，隨血液循環到全身。如進入肺動脈，可阻塞其分支，進入心臟冠狀
動物實驗基本技術2
第五節 實驗動物的采血法實驗研究中，經常要采集實驗動物的血液進行常規質量檢測、細胞學實驗或進行生物化學分析，故必須掌握正確的采集血液的技術。采血方法的選擇，主要決定于實驗的目的和所需血量以及動物種類。一、大鼠、小鼠的采血方法(一)剪尾采血：需血量很少時常用本法，如作紅、白細胞計數、血紅蛋白測定、制作
動物實驗基本技術3
第七節 實驗動物的處死當實驗中途停止或結束時，實驗者應站在實驗動物的立場上以人道的原則去處置動物，原則上不給實驗動物任何恐怖和痛苦，也就是要施行安樂死。安樂死是指實驗動物在沒有痛苦感覺的情況下死去。實驗動物安樂死方法的選擇取決于動物的種類與研究的課題。一、蛙 類常用金屬探針插入枕骨大孔,破壞腦脊髓的
動物實驗基本技術4
三、實驗動物的準備本文主要敘述制備轉基因鼠的實驗程序。(一)不育雄性公鼠:結扎公鼠與母鼠交配以后產生假孕母鼠。受結扎的公鼠需8周以上，對種系無特殊要求。在正式實驗前，結扎公鼠需與性成熟的雌性小鼠交配，反復交配兩次或三次，經檢查雌體有陰道栓，但均不懷孕產仔，則證明結扎成功。結扎公鼠使母鼠產生陰道栓的能
動物實驗基本技術2
第五節 實驗動物的采血法實驗研究中，經常要采集實驗動物的血液進行常規質量檢測、細胞學實驗或進行生物化學分析，故必須掌握正確的采集血液的技術。采血方法的選擇，主要決定于實驗的目的和所需血量以及動物種類。一、大鼠、小鼠的采血方法(一)剪尾采血：需血量很少時常用本法，如作紅、白細胞計數、血紅蛋白測定、制作
動物實驗基本技術2
第三節 實驗動物的麻醉方法麻醉(anesthesia)的基本任務是消除實驗過程中所至的疼痛和不適感覺，保障實驗動物的安全，使動物在實驗中服從操作，確保實驗順利進行。一、常用的麻醉藥(一)常用局部麻醉劑：普魯卡因，此藥毒性小，見效快，常用于局部浸潤麻醉，用時配成0.5％～1％；利多卡因，此藥見效快，組
動物實驗基本技術3
第七節 實驗動物的處死當實驗中途停止或結束時，實驗者應站在實驗動物的立場上以人道的原則去處置動物，原則上不給實驗動物任何恐怖和痛苦，也就是要施行安樂死。安樂死是指實驗動物在沒有痛苦感覺的情況下死去。實驗動物安樂死方法的選擇取決于動物的種類與研究的課題。一、蛙 類常用金屬探針插入枕骨大孔,破壞腦脊髓的
動物實驗基本技術1
第一節 實驗動物的抓取和固定在進行實驗時，為了不損傷動物的健康，不影響觀察指標，并防止被動物咬傷，首先要限制動物的活動，使動物處于安靜狀態，工作人員必須掌握合理的抓取固定方法。抓取動物前，必須對各種動物的一般習性有所了解。操作時要小心仔細、大膽敏捷、熟練準確、不能粗暴，不能恐嚇動物，同時，要愛惜動物
動物實驗基本技術2
第三節 實驗動物的麻醉方法 麻醉(anesthesia)的基本任務是消除實驗過程中所至的疼痛和不適感覺，保障實驗動物的安全，使動物在實驗中服從操作，確保實驗順利進行。 一、常用的麻醉藥 (一)常用局部麻醉劑：普魯卡因，此藥毒性小，見效快，常用于局部浸潤麻醉，用時配成0.5％
動物實驗基本技術1
第一節 實驗動物的抓取和固定在進行實驗時，為了不損傷動物的健康，不影響觀察指標，并防止被動物咬傷，首先要限制動物的活動，使動物處于安靜狀態，工作人員必須掌握合理的抓取固定方法。抓取動物前，必須對各種動物的一般習性有所了解。操作時要小心仔細、大膽敏捷、熟練準確、不能粗暴，不能恐嚇動物，同時，要愛惜動物
動物實驗的基本操作技術
動物實驗的基本操作技術實驗動物(experimental animals)是指經過人工飼養、繁育，對其攜帶的微生物及寄生蟲實行控制，遺傳背景明確或者來源清楚，應用于科研、教學、生產和檢定以及其他科學實驗的動物。這些個體具有較好的遺傳均一性、對外來刺激的敏感性和實驗再現性。?一、常用實驗動物的種類
動物實驗技術：轉基因小鼠制備實驗
1、 選取7~8周齡雌性小鼠，陰道口封閉，作為供體，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG（10 IU）。2、 47~48小時后，每只小鼠腹腔注射HCG（0.8 IU），并與正常公鼠合籠；另取數只適齡母鼠（2月齡以上）作為受體，陰道口潮紅，與結扎公鼠合籠。3、第二天上午9:00前觀察供體、受體，
實驗動物實驗標本的采集實驗——實驗動物尿液采集
實驗材料實驗動物試劑、試劑盒水儀器、耗材收集器實驗步驟尿液的采集 常用的采集方法較多，一般在實驗前需給動物灌服一定量的水。(1) 代謝籠法：此法較常用，適用于大、小鼠。將動物放在特制的籠內。一般需收集 5 小時以上的尿液，最后取平均值。(2) 導尿法：常用于雄性兔、狗。動物輕度麻醉后，固定于手術臺上
實驗動物實驗標本的采集實驗——實驗動物腦脊液采集
實驗材料實驗動物試劑、試劑盒消毒液儀器、耗材注射器實驗步驟(1) 狗、兔腦脊液的采集：通常采取脊髓穿刺法，穿刺部位在兩髂連線中點稍下方第七腰椎間隙。動物麻醉后側臥位固定，頭尾部盡量彎向腰部，去被毛。消毒后一手固定穿刺部位的皮膚，腰穿針垂直刺入，當有落空感及動物的后肢跳動時，針已達椎管內，抽去針芯，即
實驗室現場急救人員急救措施
應保持呼吸暢通,避免咽下嘔吐物,取平臥位,頭部稍低;盡力清除昏迷傷者口腔內的阻塞物,包括假牙。如傷者驚厥不止,注意不要讓他咬傷舌頭及上下唇;在護送途中,隨時注意傷者的呼吸、脈搏、面色、神志情況,隨時給以必要的處置;護送途中要注意車廂內通風,以防傷者身上殘余毒物蒸發而加重病情及影響陪送人員。
實驗動物實驗標本的采集實驗——實驗動物腹水的采集
實驗材料實驗動物試劑、試劑盒消毒液儀器、耗材注射器實驗步驟抽取大鼠、小鼠的腹水時，抓取固定動物，使動物腹部朝上，消毒皮膚，針頭在腹股溝和腹中線之間刺人腹腔，腹壓高時腹水自然流出，腹水少時可用注射器抽取。
動物實驗基本操作技術之一“實驗動物抓取與固定”
（一）小鼠用右手提起小鼠尾部，放在實驗臺上，當其向前爬行時，左手抓住兩耳及頭頸部皮膚，再置小鼠于左手心，拉直四肢并用手指夾住肢體固定。右手可行注射或其它操作。小鼠固定器及固定器固定法（二）大鼠右手輕輕抓住大鼠尾部向后輕拉，左手抓緊鼠兩耳及頭頸部皮膚，并將其固定在左手中，右手可行注射或其它操作。大鼠固