• <table id="caaaa"><source id="caaaa"></source></table>
  • <td id="caaaa"><rt id="caaaa"></rt></td>
  • <table id="caaaa"></table><noscript id="caaaa"><kbd id="caaaa"></kbd></noscript>
    <td id="caaaa"><option id="caaaa"></option></td>
  • <noscript id="caaaa"></noscript>
  • <td id="caaaa"><option id="caaaa"></option></td>
    <td id="caaaa"></td>
  • 發布時間:2019-11-03 18:10 原文鏈接: GC含量高的PCR小結

    xjktony

    擴增模板的GC 含量為66%,也不算很高,我做過更高的GC 含量(80%)的PCR.對于 這種高GC含量的PCR,要加些DMSO等,以解除其二級結構的影響,當然現在也有專門這種PCR Buffer賣.

    vanny

    寶生物有這種做高GC含量的酶和buffer,稱為LA TAKARA酶,里面有GC buffer,效果還不錯。

    westernblot

    你用DMSO5%加到里面,60%應該不是算高的,如果實在不行,就用advantage 2 high GC taq polymeras.(clontech), 效果好,就是貴了點。

    我用的退火溫度為60度可見模糊片段,但58度就只有引物二聚體了,

    你用高溫變性,向95度,5min,后加入taq酶,其余度循環中間用95度,15s,如果TM值高過60,可以考慮用65-62度,增加循環數。

    changle

    可以用雙溫法試試,比如35個循環,總變性之后,前五個循環雙溫即沒有延伸,后三十個循環三溫,具體溫度根據引物Tm值定。我試過效果不錯。

    mcli

    如果基因的5’端含有豐富的GC堿基,設計的PCR引物Tm值很高,用普通PCR很難理想地擴增出此基因。用熱啟動(hot start)和降落-PCR,能取得了較好效果。在PCR開始時加入Qiagen公司的Hotstar Taq DNA聚合酶,并延長起始變性時間如95℃變性15 min,能使模板DNA完全變性,以便提供最大數量的引物配對位點,可避免引物二聚體和非特異性配對。

    PCR反應過程中,首先在高于引物Tm值的72℃左右擴增幾個循環,然后把退火溫度逐漸降到兩引物的Tm值附近,在隨后的循環中,對退火溫度進行梯度實驗。這樣能保證第一引物-模板雜交事件發生在最互補的反應物之間,即那些產生目的擴增產物的反應物之間。

    盡管退火溫度最終會降到非特異雜交的Tm值,但此時目的擴增產物已開始幾何級擴增,在剩下的循環中處于超過任何非特異PCR產物的地位。因此,降落-PCR既能增加反應特異性,又能提高PCR產物的產量。


    為你設置循環條件為:①95℃變性15 min;②94℃ 45s,72℃ 30s,退火溫度每循環降低2.0℃,72℃ 45s,5個循環;③94℃ 45s,設置退火溫度梯度從55℃到65℃ 30s,72℃ 45s,30個循環;④72℃延伸10min。

    agct

    幾點建議:
    先優化反應條件,GC豐富的序列,退火溫度其實也不用刻意加高
    主要是變性溫度,預變性96度5分鐘然后再加酶(熱啟動)
    一般循環的變性溫度用95度比94好,還不行還可以再加高
    還有DMSO和甘油,各加到5%就足夠了,光加DMSO有的時候會使酶的半衰期下降
    mcli:

    引物GC含量分別高達70%以上時,用普通PCR很難理想地擴增出此基因。因為G、C之間形成三對氫鍵,解鏈所需能量較高,故模板較難打開,在常規變性溫度下,DNA模板變性不完全,同時由于單鏈的G+C豐富區易于自身互補配對形成穩定的發夾環二級結構,而使PCR引物難于結合到模板上,DNA聚合酶也難于延伸或停止延伸,結果常出現嚴重的非特異性條帶,甚至擴增不出靶基因。

    在擴增高含量GC的基因時,可對PCR條件進行幾個方面的優化:

    1、熱啟動(hot start)PCR:

    使用熱啟動PCR,一方面通過擴增前的加熱,使雙鏈模板充分解鏈,另一方面,通過高溫啟動反應,促進引物的特異性復性與延伸;增加有效引物的長度,提高了反應的特異性與靈敏性,并減少了引物二聚體或多聚體的形成,從而能提高GC富集區的擴增效率。

    我們采用Qiagen公司提供的Hotstar Taq DNA聚合酶,此酶含有一種熱不穩定性保護抗體( Taqstart antibody),該抗體在低溫時與Taq酶結合,抑制其活性,當反應體系達到一定的溫度后,這種熱不穩定性保護抗體就從Taq酶上脫落下來,Taq酶得以恢復活性。我們在PCR開始時就加入Hotstar Taq DNA聚合酶,并延長起始變性時間如95℃變性15 min,能使模板DNA完全變性,以便提供最大數量的引物配對位點,避免了引物二聚體和非特異性配對。

    2、降落(TD)-PCR:

    PCR開始時的退火溫度高于估計的Tm值,隨著循環的進行,退火溫度逐漸降到Tm值并最終低于這個水平。退火溫度選擇應根據引物的長度及G+C的含量,在Tm值允許的范圍內,較高的退火溫度可大大減少引物和模板的非特異性結合,提高PCR反應的特異性。

    首先在高于引物Tm值的溫度擴增幾個循環,然后把退火溫度逐漸降到兩引物的Tm值附近,在隨后的循環中,對退火溫度進行梯度實驗。這樣能保證第一引物-模板雜交事件發生在最互補的反應物之間,即那些產生目的擴增產物的反應物之間。盡管退火溫度最終會降到非特異雜交的Tm值,但此時目的擴增產物已開始幾何級擴增,在剩下的循環中處于超過任何非特異PCR產物的地位。因此,TD-PCR既能增加反應特異性,又能提高PCR產物的產量。

    3、Mg2+濃度、dNTP濃度、引物濃度、模板等也影響PCR的產量及產物特異性。它們的濃度過高反應特異性降低,過低則PCR產物產量減少,即高特異的反應條件可能與高產量的反應條件并不一致。


    人体艺术视频