1. 用生長至匯片的單層 BS-C-1 細胞建立病毒感染細胞培養液（見基本方案 1 步驟 1~5）。
2. 用完全 MEM-5 培養基將 5×105 細胞/孔放入 6 孔組織培養板培養（每孔終體積為 2 ml）。直至細胞匯片生長（應小于 24 h）。
3. 在使用前，將一定體積的痘苗病毒儲液與 0.25 mg/ml 胰酶混合，渦旋混勻。在 37℃ 水浴鍋中保溫 30 min，并在保溫過程中每隔 5~10 min 渦旋混勻一次。
病毒儲液的滴度常常在 2×109 pfu/ml 左右，但根據其來源的不同病毒滴度也可能低一些。
如果經過渦旋混勻后，還可以看見團狀物，將其冷卻到 0℃ 并在冰上超聲波作用 30 s。可以重復幾次超聲，但超聲的間隔中應當使樣品在冰上冷卻。
4. 吸出培養基，加入 1 ml （終體積）MOI 為 10~30 pfu/細胞的完全 MEM-5，培養 1~2 h，每隔大約 30 min 輕輕搖動培養板，使細胞均勻接觸病毒。
如果使用純化的病毒，應在使用前在冰上超聲 30 s （見基本方案 1 步驟 7）。
如果分析的蛋白質分泌到培養基中，要注意在感染和培養細胞的培養基中不應添加血清或使用 1% 的血清，因為高濃度的血清會干擾膠的分析。
5. 加入 2 ml 的完全 MEM-5 培養基，培養 24~48 h。
6. 細胞刮刀輕輕刮下細胞，轉移到離心管中，5~10℃，1800 g 離心 5 min，棄培養基。
對于分泌性蛋白質，用 Centricon 10 microconcentrator （Amicon） 濃縮培養基，使體積縮小到原來的 1/5。此外，培養基中的蛋白質也可以按下面的方法用三氯乙酸（TCA） 沉淀：
6.1 向樣品中加入 Triton X-100 至終濃度為 0.03% （V/V）；
6.2 加入等體積 20% TCA；
6.3 在冰上放置 15 min；
6.4 4℃，以最大轉速離心 15 min；
6.5 吸出上清，用 70% 乙醇洗沉淀；
6.6 空氣晾干沉淀，加入 5 μl 1 mol/L Tris 堿，溶于 1 × SDS 樣品緩沖液。
7. 用 200 μl 細胞裂解液重懸細胞沉淀，將其轉移至微量離心管中。渦旋混勻，在冰上放置 10 min。
8. 4℃，最大轉速離心 10 min。分離上清（細胞質）和沉淀（細胞核）。
9. 在 20 μl 的上清中加入 5 μl 5 × SDS 上樣緩沖液，95℃ 加熱 5 min。將沉淀溶于 200 μl 的 1× SDS 樣品緩沖液，95℃ 加熱 5 min。
10. 按免疫印跡方法進行操作。 展開 | 