1. 細胞的準備
a) 復蘇293細胞，傳代培養1-2代，調整好細胞狀態，務必4代以內完成轉染實驗。
b) 在轉染前1天，用胰酶消化傳代，將5×105細胞接種于6孔板或87.5px皿中，加入2ml完全培養基（DMEM+10%FBS+1%P/S+1%Glutamax），搖勻后置于5% CO2、95% 濕潤空氣、37℃培養箱中培養，以保證次日轉染時細胞密度達70%左右。
2. 轉染
a) 轉染當天，從293細胞中移除培養基，分別換上新鮮的1.8ml DMEM+10%FBS培養基（不含抗生素），37℃孵育2h。
b) 配制轉染試劑混合物
c) 使用轉染試劑POLO3000：
d) A管：將4ug DNA與 100ul DMEM（基本），混勻；
e) B管：將6ul POLO3000與100ul DMEM（基本），混勻；
f) 室溫放置5min后，將A管與B管溶液混合，輕輕混勻室溫孵育15-20min；
g) 將上述復合物均勻滴加到293細胞中，輕輕搖勻細胞培養板，37℃培養箱中孵育。
3. 腺病毒包裝
a) 轉染24-48h后觀察細胞狀態，若質粒帶熒光，可熒光顯微鏡下觀察轉染效率，此時熒光率約10-70%。細胞密度高于>90%需進行轉盤，用胰酶消化細胞全部傳到250px細胞培養皿中。
b) 此后每天觀察細胞狀態，每隔2天換一次培養基，每次換液8ml，直至有病斑（CPE）出現，之后換液采取半換即留3ml，再補5ml。
c) 傳代后的第7-10天，細胞在10 cm培養皿中出現60%的CPE，大部分細胞崩解脫落，將細胞和培養液全部收集。
4. 腺病毒粗液的制備
a) 將收獲的裝有細胞培養上清及細胞碎片的離心管放于-80°C冰箱中。30min后，將管子放置于37°C水浴鍋中，解凍15min，如此反復凍融兩次以裂解細胞。
b) 將反復凍融的病毒液4℃ 3000rpm 離心15min，去除細胞碎片。
c) 將病毒粗提液1 ml/管分裝于1.5ml離心管中，保存于-80°C冰箱。
5. 3.5 腺病毒液濃縮
a) 將上一步驟的病毒上清用0.45um的醋酸纖維素膜過濾，在過濾病毒液之前先用5ml DMEM完全培養基過濾潤濕濾膜，以減少濾膜對病毒蛋白的吸附。
b) 將過濾之后的病毒液，置于Beckman高速離心管中，4℃，50000g，離心2h。
c) 離心完畢后，將離心管拿回安全柜中，小心傾倒上清，將離心管倒扣在吸水紙上瀝干殘液。
d) 取1ml預冷的DMEM，依次加入到離心管中，用剪去尖頭的槍頭，重復多次地半量吹打沉淀，輕柔操作，將離心管底部的沉淀完全重懸于DMEM溶液中，再用１ml DMEM潤洗各管一遍，共得2ml病毒濃縮液。
e) 每管100ul小量分裝與病毒專用管中，置-80度保存。
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