乙醇沉淀法
| 實驗方法原理 | DNA 溶液是DNA以水合狀態穩定存在，當加入乙醇時,乙醇會奪DNA周圍的水分子，使DNA失水而易于聚合。一般實驗中,是加2倍體積的無水乙醇與DNA相混 合,其乙醇的最終含量占67%左右。因而也可改用95%乙醇來替代懈水乙醇(因為無水乙醇的價格遠遠比95%乙醇昂貴)。但是加95%的乙醇使總體積增大,而DNA在溶液中有一定程度的溶解,因而DNA損失也增大,尤其用多次乙醇沉淀時,就會影響收得率。折中的做法初次沉淀DNA時可用95%乙醇代替無水乙醇,最后的沉淀步驟要使用無水乙醇。也可以用0.6倍體積的異丙醇選擇性沉淀DNA.一般在室溫下放置15-30分鐘即可。 |
|---|---|
| 實驗材料 | DNA |
| 試劑、試劑盒 | 乙酸鈉 乙醇 |
| 儀器、耗材 | EP管 低溫離心機 移液器 -70度冰箱 |
| 實驗步驟 |
1. 酶切前確定待切樣品的濃度, 并選擇合適的限制性內切酶和配套Buffer。
2. 在離心管中加入如下成分： 10xBuffer 1ul 待切樣品 xul 酶 0.5-1ul ______________________ 加水補足10ul
3. 混勻樣品并短暫離心使樣品沉于管底。
4. 將離心管置于37℃中溫育1-3hr，若待切樣品為PCR 產物，則可將反應時間適當延長。
5. 用未酶切的質粒作為對照，瓊脂糖電泳鑒定酶切結果。
注：當酶切樣品用于回收而不是鑒定時，可按比例適當加大反應體積。雙酶切可選用二者活性都較高的Buffer 或者通用Buffer，但要注意不能有星反應。
展開 |
| 注意事項 |
移去上清液時需要緩慢操作，以免將DNA樣品弄出。
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| 其他 |
乙醇可以任意比和水相混溶,乙醇與核酸不會起任何化學反應,對DNA很安全,因此是理想的沉淀劑。
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