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  • 試劑、試劑盒

    濃硝酸

    儀器、耗材

    玻璃蓋玻片層流柜

    實驗步驟

    一、蓋玻片的預處理

    1. 玻璃蓋玻片放在瓷染色架上,用蒸餾水沖洗。

    2. 架子放在玻璃容器中,濃硝酸泡 48 小時。

    3. MilliQ 水漂洗蓋玻片 1 小時,重復 3 次。

    4. 200℃ 烤 8 小時滅菌蓋玻片。

    5. 在層流柜中將蓋玻片放在 60 mm 培養皿,外邊緣放兩粒(1~2 mm 高)融化的無菌 Paraplast。顆粒的大小決定了蓋玻片和培養皿單層神經膠質細胞間的分離程度。

    6. 加入 5 ml 過濾除菌的溶于硼酸緩沖液(0.1 mol/L,pH 8.5)的 1 mg/ml poly-L-lysine 溶液,室溫過夜。

    7. 無菌 MilliQ 水漂洗 1 小時。重復 3 次。

    8. 吸出漂洗液,加 5 ml 接種培養基(MEM 加 10% 馬血清),接種分離神經元之前放在 CO2 溫箱中 37℃ 孵育至少 24 小時。

    二、單層神經膠質細胞的制備

    1. 去掉 1~3 天幼大鼠的頭。

    2. 在層流柜中從頭顱骨上取下腦,放在盛有 BSS 的培養皿中。

    3. 在解剖顯微鏡下取出腦半球,完全剝離腦膜、切碎腦組織,放入盛有 25 ml 0.25% 胰酶 BSS 溶液的 50 ml 組織培養管。

    4. 37℃ 水浴孵育 30 分鐘。

    5. 小心吸出胰酶溶液,加 25 ml BSS,用巴斯德吸管吹散細胞。

    6. 離心收集細胞(1000 r/min,10 分鐘),懸于接種培養基中。

    7. 計數細胞,懸液稀釋至 200000 細胞/ml,取 4 ml 接種 60 mm 組織培養皿。

    8. 24 小時后倒掉培養液,加 5 ml 新鮮培養液。

    9. 每周換一次培養液,神經膠質細胞 70% 長滿時即可用于共培養。

    10. 制備神經元培養物時,提前一天更換神經元培養液,加 6 ml 維持培養液繼續培養。

    展開


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