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  • 發布時間:2019-03-27 22:58 原文鏈接: 制備克隆實驗

    試劑、試劑盒

    ATP-巰基乙醇IPTGX-gal平末端限制酶連接緩沖液T4DNA 連接酶平末端插入物克隆載體培養基

    儀器、耗材

    FALCON 2059 多聚丙烯試管37°C 恒溫箱水浴箱

    實驗步驟

    一、材料

    1. 緩沖液、溶液和試劑

    ATP(10 mmol/L)

    β-巰基乙醇(可選擇)

    IPTG(100 mmol/L,溶于水中)

    X-gal(100 mg/ml,溶于二甲基甲酰胺)

    2. 酶和酶緩沖液

    平末端限制酶(5U), 比如,SrfⅠ限制性內切酶(Stratagene)

    連接緩沖液,l0X(250 mmol/LTris-HCl、pH7.5,100 mmol/L 氯化鎂,100mmol/LDTT,200ug/ml BSA)

    T4DNA 連接酶(4U)

    3. 核酸和寡核苷酸

    平末端插入物(100ng/ul)

    克隆載體(10ng/ul)

    4. 培養基

    (1)SOC 培養基(每升用量:20 g tryptone,5 g 酵母提取物,0.5 gNaCl,加水到 900 ml。高壓滅菌。另外,單獨混合好下面物質:2.03 g 氯化鎂,1.2 g 硫酸鎂,3.6 g 葡萄糖,加水到終體積為 100 ml,過濾滅菌。然后加入已涼下來的高壓滅菌過的培基)。

    (2)LB(Luria Broth) 球脂平板 [每升用量:lOg NaCl,lOg Bacto-tryptone,5 gBacto-酵母提取物,20 g Bacto 瓊脂。用 5mol/LNaOH 調整 pH 到 7.0。加入去離子水到終體積為 1L。高壓滅菌,然后倒入培養皿中(大約 25 ml/100 mm 平板)]。

    (3) 青霉素-新青霉素 LB 平板(20ug/ml 青霉素,80ug/ml 新青霉素)。用來降低衛星菌落的形成。高壓滅菌的培養基冷卻到 55°C, 再加入過濾滅菌的抗生素。

    (4) 氯霉素 LB 平板(30ug/ml)。
    高壓滅菌的培養基冷卻到 55°C, 再加入過濾滅菌的抗生素。

    (5) 可以選做 X-gal/IPTG 平板:若要表型選擇轉化子,向含有適當抗生素的瓊脂平板中加入 20ul X-gal 和 20ul IPTG 溶液,立即搖勻,使它們分布均勻(可能會出現輕微的沉淀)。
    不要混合 X-gal 和 IPTG, 因為這些化合物會沉淀。
    重要:在涂板前讓平板干燥 15~30 min。

    5. 專用設備

    FALCON 2059 多聚丙烯試管

    37°C 恒溫箱

    水浴,預設到 37°C、42°C、65°C

    6. 細胞和組織

    適當的大腸埃希菌菌株,比如,XLl-Blue(Stratagene),按照 Sambrook 和 Russe Ⅱ(2001) 所述方法做成感受態,或者去買做好的。

    二、方法

    1. 連接

    (1)在一個高壓滅菌的 1.5 ml 試管中建立 PCR-Script 反應體系,按順序加入如下試劑。

    克隆載體(10ng/ul)                                 1ul

    連接反應緩沖液,10X                              1ul

    ATP(10 mmol/L)                                        0.5ul

    Pfu 拋光 PCR 產物插入物*                       1~4ul

    Srf I 限制性內切酶(5U)                           1ul

    T4DNA 連接酶(4U)                                 1ul

    H2O                                                          補充到 10ul

    *對于連接反應,理想的插入物:載體 DNA 值是可變的。對于樣品 DNA, 從 5:1(當用拋光插入物時)到 100:1(當用非拋光插入物時)可能是必需的。用非拋光插入物時需要更大的插入物:載體值,這是因為 PCR 片段兩端都是平末端的機遇很低。對一個特定的插入片段,最好用下面的方程來優化條件:

                                                                 pmol 末端/ugDNA=2X106/堿基對數目

    (2)輕輕混勻,在室溫溫浴 1~2 h。

    (3)65°C 熱處理樣品 10min。

    (4)把樣品在冰上保存,準備轉化感受態大腸桿菌。

    2. 轉化

    (1)在冰上融化感受態細胞。

    (2)輕輕攪動混勻細胞,移取 40ul 細胞到一個 15 ml 預冷的 FALCON 2059 試管。

    (3)可選做:向 40ul 細菌中加入,疏基乙醇(至終濃度為 25 mmol/L)。

    (4)輕輕攪動,置于冰上 10min, 每隔 2 min 輕輕攪動一下。

    (5)加入 2ul 已經熱處理過的連接反應產物 DNA(第 4 步,克隆程序)。

    (6)置于冰上 30 min。

    (7)在 42C 水浴中熱擊 30s。要獲得最高的效率,熱擊時間長短非常關鍵。

    (8)把轉化混合物置于冰上 2 min。

    (9)加入 450ul 預熱(42°C) 的 SOC 培養基,37°C225~250r/min 振蕩培養 1h。

    (10)取出 50~200ul(100ul 是標準用量)轉化好的混合物,用一個無菌的到叉將它們均勻涂布于恰當的抗生素平板上。

    可以選做:向 LB 平板中加入一種可以生成色素的底物來檢測重組體;同時參見β-半乳糖苷酶顏色選擇,如下。
    如果涂 100ul 振蕩培養物,可以直接把細胞涂布在平板上; 如果涂少于 100ul 轉化混合物,用 SOC 培養基將轉化混合物的最終體積增加到 200ul, 再進行涂板。

    (11)將平板在 37°C 培養過夜(大約 16 h)。

    (12)選擇白斑進行檢測,不要選那些有輕微藍色或者中心是藍色的克隆。
               含有插入的菌落最初是白色,在平皿中 2~5 天后可能會出現輕微的藍色。


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